In vivo RyR1-redukció az izomban core-like myopathiát vált ki

Generation of the RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2 egérmodell

A RYR1 gén 9-11. exonjának mindkét oldalára loxP-helyeket beillesztett egérvonalat (ún. RyR1Flox/Flox) párosítottunk a tamoxifenfüggő Cre-ERT2 rekombinázt a humán vázizom α-aktin gén kontrollja alatt expresszáló HSA-Cre-ERT2 egérvonallal , hogy létrehozzuk a RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2-t. A tamoxifen injekció a Cre-ERT2 rekombináz szelektív aktiválását indukálja a vázizomban, ami a 9-11. exon delécióját és a RYR1 gén megszakítását eredményezi a vázizomban, szigorú tamoxifenfüggőséggel (1a. ábra). Születéskor a RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2 egerek normálisak voltak, és 2 hónapos korukban, amikor már fiatal felnőttek voltak, a rekombinációt tamoxifen injekcióval indukálták (ettől az időponttól kezdve a rekombinált állatokat RyR1-Rec-nek neveztük). A molekuláris és élettani következményeket a továbbiakban az idő függvényében vizsgáltuk, egészen a rekombináció indukcióját követő 105 napig (1b. ábra). A kontroll állatok (CTRL) RyR1Flox/Flox (HSA-Cre-ERT2 transzgén nélkül) tamoxifennel injektált alomtestvérek. A rekombinált egerek általános fenotípusát 75 napos korban a hátsó végtagok abnormális mozgékonyságával és billegő járással társuló kyphosis jellemzi. Az állatok még képesek a hátsó lábukra állni, hogy táplálkozzanak, de a betegség előrehaladtával a táplálékpelleteket szisztematikusan közvetlenül a ketrecbe adták. 105 nap elteltével az állatok még mindig mozgékonyak a ketrecükben, és a CTRL-hez képest nem észleltek megnövekedett elhullási arányt. Mind a hímek, mind a nőstények érintettek voltak. A RyR1 mRNS-szintű relatív mennyiségét a rekombinációt követő 15 naponként RT-q-PCR segítségével elemeztük a quadricepsz izomban a CTRL és a RyR1-Rec állatokban (1c. ábra). A RyR1 mRNS gyors csökkenését figyeltük meg, a kezdeti érték 21% ± 4%-ának megfelelő alacsony és stabil szintet már 3 nappal a tamoxifen beadása után elértük. A rekombináció indukciója után 75 nappal valamennyi vizsgált izomban (Quadriceps, tibialis anterior, EDL, soleus, Additional file 1: S1A ábra) csökkenés volt megfigyelhető. A RyR1 fehérje mennyiségét tovább elemeztük, kvantitatív Western blot segítségével a quadriceps izom homogenátumaiban (1d, e ábra). Ez a mennyiség fokozatosan csökkent, és 105 nap után elérte a kiindulási érték kb. 50%-át. A RyR1 fehérje további csökkenése nem volt megfigyelhető hosszabb idő alatt (az adatok nem láthatóak). A RyR1 fehérje mennyiségét a különböző izomhomogenátokban 75 nappal a rekombinációt követően számszerűsítettük. Minden vizsgált izomban csökkenés volt megfigyelhető, bár a fennmaradó mennyiség kissé különbözött az egyes izmok között, a legmagasabb az interosseusban (64% ± 5%) és a legalacsonyabb a soleusban (33% ± 5%) (Additional file 1: S1B ábra).

Fig. 1

RyR1 mRNS és fehérje csökkenése tamoxifen injekció után a RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2 egérmodellben. a A RyR1 WT allél 9-11. exonjának mindkét oldalán LoxP-helyeket illesztettünk be a RyR1-flox allél létrehozásához. A rekombinációt követően a RyR1-Rec allél a 9-11. exonokkal együtt deletálódik. A panelgondozás RyR1 transzkriptjének RT-q-PCR-amplifikációjához használt primereket a piros nyilak ábrázolják a 103-as, illetve a 104-es exonban. b Az állatoknak 2 hónapos korukban (D0) tamoxifent adtunk be a rekombináció kiváltására, és ezt követően változó időpontokban elemeztük őket. c Az mRNS relatív mennyiségét a béta-aktinhoz, a HPRT-hez és a GAPDH-hoz mint referenciagénekhez képest RT-q-PCR segítségével értékeltük n = 3-6 különböző egér quadricepsz izomzatában minden egyes időpontban, és minden időpontra átlag ± SEM értékben van feltüntetve. A CTRL littermátusban lévő mennyiséget 1-re állítottuk be. A mennyiségi meghatározást a ∆∆Ct módszerrel végeztük. Statisztikai elemzés: Egyirányú ANOVA Holm-Sidack-teszttel a többszörös összehasonlításhoz. d A RyR1 relatív mennyiségét a miozin nehézlánchoz képest kvantitatív Western blot segítségével értékeltük n = 3-6 különböző egér quadriceps homogenátumában minden időpontban. A kiindulási mennyiséget 1-re állítottuk. e A RyR1 reprezentatív Western blotja CTRL és RyR1-Rec quadriceps homogenátokon különböző időpontokban, a fehérje mennyiségének kontrolljaként a miozin nehézláncot használva. Statisztikai elemzés: Egyirányú ANOVA Holm-Sidack-teszttel a többszörös összehasonlításhoz

A RyR1-Rec egereknél az izom- és testtömeg, valamint az izomerő progresszív csökkenése figyelhető meg

A RyR1-csökkentés következményeit először az egész állat szintjén vizsgáltuk. Kezdetben azonos súly mellett a CTRL állatok súlya lassan, 24,4 ± 0,4 g-ról 30,6 ± 0,8 g-ra nőtt D90-re, míg a RyR1-Rec állatok súlya fokozatosan csökkent D90-re 20,6 ± 1,3 g-ra (2a. ábra). Mind a hímek, mind a nőstények érintettek voltak, és 75 nap után a kezdeti testsúlyuk mintegy 13%-át veszítették el (Additional file 1: S1C ábra). Ez az összes izomban megfigyelt súlycsökkenés eredménye (Additional file 1: S1D ábra). Az általános izomteljesítmény RyR1-csökkentést követő vizsgálatához az állatokat két különböző erőpróbának vetettük alá. Először mind a négy mancsukkal 5 percig lóghattak egy kereszthuzalos felületet megragadva, az esés latenciája az izomerő mértékét tükrözte. A 105 napon keresztül hetente végzett fogásvizsgálat (2b. ábra) azt mutatta, hogy a RyR1-Rec állatok 20-30 nappal a tamoxifen injekció beadása után, amikor a RyR1 mennyisége a kezdeti érték 75-80%-a volt, elkezdtek veszíteni az erejükből, és körülbelül 75 nappal a tamoxifen beadása után már nem tudtak a rácson lógni, mivel a RyR1 mennyisége elérte a 60% körüli szintet. Az izomerőt a gastrocnemius izom 6 perces nem invazív elektrostimulációs protokolljával is értékelték, amelyet anatómiai mágneses rezonanciás képalkotással (MRI) párosítottak általános érzéstelenítésben. A CTRL állatok elektrostimulációs protokollja során 30 nappal a tamoxifen injekció beadása után (2c. ábra, D30) tipikus edzésprofilt rögzítettünk, stabil kezdeti izomerővel, amely az izom kifáradásával lassan csökkent. A CTRL-csoportban D60 és D90 időpontban a mozgásprofil az állatok öregedésével javuló izomerőt mutatott (2c. ábra). Ezzel szemben a RyR1-Rec állatok teljesítménye, hasonlóan a CTRL-hez D30-ban, az életkor előrehaladtával romlott. A RyR1-Rec állatok D90-ben már nem tudták elvégezni a gyakorlatot (2c. ábra, RyR1-Rec D90). Az MR-felvételek segítségével mért gastrocnemius térfogat (2d. ábra) a CTRL állatokban stabil maradt D30-tól (161 ± 5 mm3 ) D90-ig (164 ± 4 mm3 ). Ezzel szemben a RyR1-Rec egerekben a gastrocnemius térfogata D30-tól kezdve szignifikánsan kisebb volt, mint a CTRL egerekben (141 ± 3 mm3, p = 0,003), és tovább csökkent 100 ± 3 mm3 -re D60-ra (p < 0,001 az azonos korú CTRL-hez képest) és 69 ± 4 mm3 -re D90-re (p < 0,001 az azonos korú CTRL-hez képest). A maximális specifikus rángási feszültség (izomtérfogatra normalizált abszolút rángási feszültség) megerősíti, hogy mindkét csoport hasonló izomerővel rendelkezett D30-ban (2e. ábra), de a RyR1-Rec állatok ereje drámaian csökkent, míg a CTRL állatoké nőtt az életkor előrehaladtával. Ezenkívül a gastrocnemius izom bioenergetikájának változásait az elektrostimuláció során noninvazív módon, in vivo 31-foszfor (31P) MR-spektroszkópiával értékeltük D60-ban. Míg a bazális intramiofibrilláris pH nem különbözött a két csoport között (Additional file 1: S2A ábra), az acidózis mértéke az edzés végén alacsonyabb volt (p = 0,016) a RyR1 Rec állatokban (Additional file 1: S2B ábra), ami arra utal, hogy ezekben az állatokban csökkent a glikolitikus fluxus az edzett izomban. Ezenkívül az edzés utáni foszfokreatin reszintézis időállandója (τPCr) szignifikánsan rövidebb volt (p = 0,047) a RyR1-Rec egerekben (Additional file 1: S2C, D ábra), ami a jobb in vivo mitokondriális funkciót tükrözi. Valóban, a PCr-szintézis az edzés utáni regenerációs időszakban kizárólag az oxidatív ATP-szintézisre támaszkodik, így a τPCr az oxidatív foszforilációs kapacitás indexének tekinthető . Összességében ezek az eredmények azt mutatják, hogy a RyR1 progresszív csökkentése progresszív súlycsökkenéssel és az izomerő csökkenésével jár.

2. ábra

A RyR1-Rec egereknél az izom- és testtömeg, valamint az izomerő progresszív csökkenése figyelhető meg. a A testtömeg és b Az izomerő a rekombinációt követő idő függvényében becsült értékek egy olyan fogásvizsgálat segítségével, amelyben az állatok 5 percig (300 s) tudnak fejjel lefelé lógni egy rácson. Az adatok minden csoportban n = 10-15 állat átlaga ± SEM, * p < 0,05 Student’s t-próba Holm-Sidack korrekcióval a többszörös összehasonlításokra. c A gastrocnemiusban kialakult feszültség rögzítése 6 perces, 2 Hz-es elektrostimulációs protokoll során. Longitudinális vizsgálat ugyanazon állatokon (CRTL, bal panel, és RyR1-Rec, jobb panel) a rekombinációt követő különböző időpontokban, 30 nappal (D30), 60 nappal (D60) és 90 nappal (D90). Az adatok n = 8 CRTL és n = 6 RyR1-Rec állat átlaga ± SEM. d CTRL (n = 8) és RyR1-Rec (n = 6) egerek gasztrocnemius izomtérfogata 30, 60 és 90 nappal a rekombinációt követően. Az adatok átlag ± SEM. Statisztikai elemzés: poszt hoc LSD Fisher-teszt a kétutas ismételt méréses ANOVA-t követően, *szignifikánsan különbözik a CTRL-től ugyanabban az időpontban, aszignifikánsan különbözik a D30-tól ugyanabban a csoportban, bszignifikánsan különbözik a D60-tól ugyanabban a csoportban. e Maximális specifikus rángatófeszültség (a gastrocnemius térfogatra normalizált maximális rángatófeszültség). Statisztikai elemzés: szignifikánsan különbözik a CTRL-től ugyanabban az időben, aszignifikánsan különbözik a D30-tól ugyanabban a csoportban, bszignifikánsan különbözik a D60-tól ugyanabban a csoportban

A RyR1-Rec egerekben az izolált rostok fiziológiai tulajdonságai károsodtak

Az izomfunkció megváltozását tovább jellemeztük az egyes izomrostok szintjén a teljes sejtfeszültség-clamp és a konfokális képalkotás kombinációjával . A T-tubulus hálózatot a plazmamembrán di-8-anepps festésével képezték le. A CTRL és RyR1-Rec rostok között nem észleltünk minőségi különbséget a hálózatban (3a. ábra, balra) vagy mennyiségi különbséget az átlagos T-tubulus sűrűségben, az átlagos nyugalmi szarkomer hossz enyhe, de jelentős rövidülése mellett (3a. ábra, jobb oldali grafikonok). A DHPR-en keresztüli feszültség-aktivált Ca2+-beáramlást (3b-d. ábra) és a RyR1-en keresztüli Ca2+-felszabadulási fluxust (3e-i. ábra) egyidejűleg vizsgáltuk. A CTRL rostokhoz képest a RyR1-Rec rostok feszültség-aktivált DHPR Ca2+ áramot mutattak hasonló időbeli lefolyással (3b. ábra), de csökkent sűrűséggel, amint azt a két csoportban az áramsűrűség csúcsértéke a feszültség függvényében mutatja (3c. ábra), ami a maximális konduktancia (Gmax) 30%-os csökkenését jelentette, az áram és a feszültség kapcsolat egyéb paramétereinek ehhez társuló változása nélkül (3d. ábra). Az SR Ca2+ felszabadulásának feszültségfüggését a Ca2+-érzékeny festék, a rhod-2 vonalas képalkotásából vizsgáltuk. A RyR1-Rec rostokból származó line-scan képek minőségileg hasonlóak voltak a CTRL rostokból származó képekhez (3e. ábra), a fluoreszcencia gyors emelkedését mutatták a T-tubulus membrán depolarizációjára, térben homogénen a szkennelt vonal mentén. Az SR Ca2+ felszabadulás sebessége (3g. ábra), amelyet a növekvő amplitúdójú depolarizációs impulzusok által kiváltott rhod-2 fluoreszcencia változásaiból számítottunk (3f. ábra), hasonló időbeli lefolyást mutatott a RyR1-Rec rostokban, mint a CTRL rostokban, de fontos, hogy a csúcsértékek csökkentek a RyR1-Rec-ben. Az SR Ca2+ felszabadulás csúcssebességének illesztése a feszültség függvényében (3h ábra – felső grafikon) azt mutatta, hogy a Ca2+ felszabadulás maximális sebessége 25%-kal csökkent a RyR1-Rec csoportban (3i, Max ábra), a meredekségi tényező (k) is enyhén, de jelentősen csökkent, míg a középaktivációs feszültség (V0,5) nem változott. A RyR1-Rec rostokban (3h. ábra, alsó grafikon) az SR Ca2+ felszabadulás csúcsértékig eltelt idejének enyhe (átlagosan 1,3 ms), de szignifikáns növekedése volt megfigyelhető. A rostok citoszolikus Ca2+ eltávolítási képességében (SERCA pumpafunkció), amelyet az alacsony affinitású Ca2+-érzékeny fluo-4 FF festékkel mértünk nem-EGTA-pufferelési körülmények között, nem észleltünk változást (Additional file 1: S3 ábra). Összességében ezek az eredmények azt mutatják, hogy a RyR1 mennyiségének 35%-os csökkenése az interosseusban a DHPR-en keresztüli kalciumáram 30%-os csökkenésével és a RyR1-en keresztüli kalciumáram 25%-os csökkenésével jár együtt.

3. ábra

Az izgalom-összehúzódás-kapcsolás egyes izolált izomrostokban megváltozott. Minden érték átlag ± SEM. A statisztikai szignifikanciát Student’s t-próbával határoztuk meg. a CTRL és RyR1-Rec rostból származó di-8-anepps-szel festett T-tubulus hálózat reprezentatív konfokális képei, amelyek lehetővé teszik a T-tubulus sűrűség és a szarkomer hossz értékelését, 42 CTRL rostban és 41 RyR1-Rec rostban (4 egér minden csoportban). b Reprezentatív DHPR Ca2+ áram egy CTRL és egy RyR1-Rec rostból 0,5 s hosszú depolarizációs lépésekre adott válaszként a jelzett szintekre (10 mV növekmény). c A DHPR Ca2+ áram csúcssűrűségének feszültségfüggése. d A c görbék illesztéséből kapott paraméterek 29 CTRL rostban és 30 RyR1-Rec rostban (5 egér minden csoportban), (vö. Additional file 1: Supp. Method). e Reprezentatív x,t képek a rhod-2 fluoreszcenciáról (a.u.) egy CTRL és egy RyR1-Rec rostból, amelyet – 10 mV-ra depolarizáló feszültségkapocs-impulzussal stimuláltak. f Reprezentatív vonalátlagolt rhod-2 Ca2+ tranziensek egy CTRL és egy RyR1-Rec rostból a jelzett szintekre adott feszültségkapocs-impulzusokra adott válaszként. g Az SR Ca2+ felszabadulás sebessége az f-ben látható görbékből kiszámítva. h Az SR Ca2+ felszabadulás csúcssebességének feszültségfüggése (fent) és az SR Ca2+ felszabadulás csúcssebességig eltelt idő (lent). i Az SR Ca2+ felszabadulás csúcssebességének és a feszültség közötti kapcsolat Boltzmann-függvénnyel való illesztéséből kapott paraméterek az egyes rostokban (lásd Additional file 1: Supplementary Method). Az adatok ugyanazokból a rostokból származnak, mint a b-d

A RyR1 csökkenése befolyásolja a vázizomzat szerkezetét

A RyR1 csökkenésével járó ezen funkcionális változások alapjainak jobb megértése érdekében az izomszerkezetet RyR1-Rec állatokon vizsgáltuk a rekombinációt követő D75-ös időpontban, és összehasonlítottuk a CTRL állatokkal. Az Extensor digitorum longus (EDL), egy gyors rángású izom, a soleus, egy lassú rángású izom és a tibialis anterior (TA), egy vegyes izom elemzését hematoxilin-eozin, NADH és Gomori trikróm festésekkel végeztük. A 4a. ábrán bemutatott TA-festések a RyR1-Rec állatokban rendellenes izomszerkezetet mutatnak, fibrosis vagy központi magok nélkül, de rostsorvadással, amely mind az I., mind a II. típusú rostokat érinti (2. táblázat). A mitokondriumok dezorganizációja, amelyet ugyanazon rost szomszédos régióiban helyi felhalmozódás/elhalványulás jellemez (nyílhegy és a 4a. ábra betétje), valamint a Gomori-trikriklómmal megfigyelt vörös festékfelhalmozódás (Additional file 1: Fig. S4) is megfigyelték, amely hasonlít a betegeknél nemrégiben leírt poros magokra. Az EDL-ben mindkét rosttípusban rostsorvadást figyeltek meg, bár a csökkenés az I-es típusú rostokban kissé jelentősebb volt (2. táblázat). A CTRL és RyR1-Rec egerek transzverzális TA metszetét RyR1 és desmin elleni antitestekkel festették meg. A RyR1-Rec TA szelvényekben nem volt megfigyelhető változás az I. és II. típusú rostok közötti RyR1-eloszlásban, ami hasonló RyR1-csökkenésre utal minden rosttípusban (4b. ábra). Meglepő módon a desmin eloszlásában jelentős módosulást figyeltünk meg, a kis I-es típusú rostokban nagymértékű növekedéssel (4b. ábra): a CTRL TA metszetekben minden rost hasonló perifériás festődést mutatott, míg a RyR1-Rec TA metszetekben a kis I-es típusú rostok mind a rostperiférián, mind a citoszolban erősen festettek voltak (4b. ábra). Bár az IF-jelölés nem kvantitatív, ezek az eredmények azt mutatják, hogy a RyR1-redukció valószínűleg homogén volt, anélkül, hogy a szomszédos rostok között hatalmas különbség lett volna, mint a desmin esetében megfigyelhető, a Western blottal végzett kvantitatív meghatározás az egyes rostokban található fehérje tükrözése, és nem a 0% RyR1-et tartalmazó rostok és a 100% RyR1-et tartalmazó rostok átlaga ugyanazon az izmon belül.

4. ábra

Hisztológiai és immunfluoreszcens elemzések jelentős defektusokat mutatnak az izmokban. a TA CTRL és RyR1-Rec egerek D75-ös keresztmetszetét hematoxilin/eozinnal (H&E) és NADH-val festettük. A mitokondriumok lokalizációja (NADH-festés) inhomogén a RyR1-Rec rostokban, különösen a kis sötét I. típusú (lassú), magas mitokondriumtartalmú rostokban (nyílfej és betét). A sejtmagok (kék pontok H&E festéssel) a rostok perifériáján helyezkednek el, és regenerálódó rostokra utaló jelek nem láthatók. Sáv 50 µm. b D75 CTRL és RyR1-Rec egerekből származó transzverzális TA metszeteket RyR1 (zöld) és desmin (piros) elleni antitestekkel festettük. Sáv 50 µm, a betétben 10 µm

Táblázat 2 Az izomrostok átmérőjének elemzése

Az izolált EDL rostok immunfluoreszcens jelölésével tovább vizsgáltuk a triádok szerveződését (5a. ábra). Az alfa-aktinin (mint a Z-vonal markere), a triadin és a RyR1 (mint triádmarkerek) jelölése a RyR1-Rec EDL rostokon azt mutatta, hogy a RyR1 mennyiségének csökkenése a rost általános dezorganizációját eredményezte, a triádok abnormális lokalizációjával és a Z-vonal megszakításával, de a triadin és a RyR1 még mindig részben kolokalizálódott. Bár a triádok a Z-vonal mindkét oldalán megmaradtak, a Z-vonal nem alkotott egyenes vonalat, mint a CTRL-ben, hanem számos mikro-megszakadást mutatott (5a. ábra mellékelve). Az izom ultrastruktúráját elektronmikroszkópiával elemeztük a RyR1-Rec EDL rostokon D75-ben (5b. ábra). Egyes régiók viszonylag megőrzött struktúrával rendelkeztek (5b. ábra, bal oldali rost), míg néhány szomszédos régió erősen dezorganizált volt, a szarkomerek szabályos szerveződésének zavarával, a mitokondriumok dezorganizációjával és számos membránköteg jelenlétével (5b. ábra, nyilak, nagyítva a betétben), amelyeket korábban többszörös triádoknak neveztek . E többszörös triádok morfológiai jellemzőit a normális szimpla triádokhoz képest a 3. táblázat mutatja be, további példák pedig az 1. kiegészítő fájlban találhatók: S5 ábra. A feltételezett T-tubulus szélességének, a feltételezett SR szélességének és az intermembrán (T-tubulus/SR) térnek a pontos számszerűsítése (Additional file 1: S5 ábra) a T-tubulus átlagos méretének hatalmas növekedését mutatta ki ezekben a többszörös triádokban (kétszeres növekedés, elérve a normál triádban a T-tubulus méretének 202%-át), míg az SR átlagos szélessége csak kis mértékben nőtt (+ 10%), és az intermembrán tér nem változott. Ezek az eredmények a RyR1-Rec egerek izomzatának általános strukturális dezorganizációjára utalnak, amely a membránok átalakulásával jár együtt.

5. ábra

Az EDL izomrostokban általános strukturális dezorganizáció figyelhető meg. a D75 CTRL és RyR1-Rec egerekből származó EDL rostokat RyR1 (zöld), triadin (piros) és alfa-aktinin (fehér) elleni antitestekkel festettük. A sáv 10 µm, a betétben 2 µm. b Elektronmikroszkópos elemzés D75 RyR1-Rec egerek hosszanti EDL-szelvényén. A bal felső rost normális szerkezetű, a szomszédos alsó rost rendkívül dezorganizált, néhány µm hosszúságúra nyúló nagy membránkötegekkel (akár 15 köteg, nyilak). A betétben két többszörös triász látható, a bal oldalon a T-tubulusoknak megfelelő membránokat világossárgával, az SR lapokat világoskékkel színeztük a jobb szemléltetés érdekében. Az SR szegmensen belül, a szomszédos T-tubulussal való érintkezési hely mentén végig látható némi elektronsűrű anyag, ami fehérjék felhalmozódásának felelhet meg. Sávok 1 µm

3. táblázat Egy- és többszörös triádok morfológiai jellemzése

A RyR1 redukció számos fehérje mennyiségének módosításával jár

A RyR1 redukció következményeit molekuláris szinten kvantitatív Western blot segítségével vizsgáltuk a quadriceps izomban CTRL vagy RyR1-Rec egerek (minden csoportban 8 állat) tamoxifen injekciót követő D75-ös időpontban (ábra. 6). A kalciumkezelésben közvetlenül vagy közvetve részt vevő számos fehérje relatív mennyiségét becsültük meg, referenciaként a fehérjék festékmentes értékeléssel meghatározott teljes mennyiségét használva . A RyR1 mennyiségi meghatározásában nem tapasztaltunk különbséget e módszer és a miozin nehézlánc referenciafehérjeként való használata között (1., 6. ábra összehasonlítása). A T95 triadin izoforma, a CSQ1 kalciumkötő fehérje, a CSQ1, a Ca2+-ATPáz SERCA, a mitokondriális FoF1-ATPáz és a DHPR alfa-1 alegységének mennyiségében nem észleltünk jelentős változást a CRTL és a RyR1-Rec izmok között (6a, b ábra). Ezzel szemben növekedés volt megfigyelhető az STIM1 (× 3,7 ± 1, p = 0,02), a triadin T51 izoforma (× 1,6 ± 0,1, p < 0,001), a CLIMP63 (× 1,8 ± 0,2, p = 0,004) és az ORAI1 (× 3,7 ± 1, p = 0,017) mennyiségében. Mivel immunfluoreszcens jelöléssel a desmin strukturális fehérje lokalizációjának módosulását figyeltük meg (5b. ábra), a desmin expressziós szintjét is számszerűsítettük, és a desmin mennyiségének hatalmas növekedését tapasztaltuk (× 8,2 ± 1,2, p = 0,001). A CLIMP63 és STIM1 lokalizációját a RyR1-Rec EDL rostokban immunfluoreszcens jelöléssel elemeztük, és nem észleltünk jelentős módosulást (Additional file 1: S6 ábra). Ezért a RyR1 fehérje csökkenése a kalciumszabályozásban vagy az izomarchitektúrában szerepet játszó különböző fehérjék növekedésével járt együtt.

6. ábra

A D75 egerek quadriceps izmaiban expresszálódó fehérjék kvantitatív Western blot analízise számos fehérje expressziójának növekedését mutatja. a Reprezentatív Western blotok az egyes fehérjékre vonatkozóan 2 különböző CTRL (C) és 2 RyR1-Rec (R) egérből származó D75 quadriceps homogenátokon. b Az egyes fehérjék mennyiségének normalizálása a teljes fehérjemennyiségre vonatkoztatva, minden csoport 8 különböző állatán (CTRL, hátsó sávok és RyR1-Rec, kék sávok). Az egyes állatokra vonatkozó érték legalább 3 blot átlaga. Minden adatot átlag ± SEM értékben mutatunk be. A CTRL csoportban az átlagértéket minden egyes fehérje esetében 1-re állítottuk be. Statisztikai elemzés: t-próba Holm-Sidak módszerrel többszörös összehasonlításokra

Autofágia megváltozik a RyR1 csökkenése következtében

Az autofágia megváltozását figyelték meg néhány myopathiában . A RyR1-redukciót követő izomsorvadáshoz vezető mechanizmusok azonosítása érdekében RyR1-Rec izmokban az autofágia fluxusban bekövetkező változásokat kerestük. Az LC3 II, az autofágoszómák membránfehérjéjének mennyiségét kvantitatív Western blot segítségével értékeltük (7a, b ábra), és az LC3 II növekedését figyeltük meg (172% ± 32%, p = 0,03). Az autofagoszómák e növekedése vagy az autofagoszómák képződésének növekedését (az autofágia folyamatának növekedése miatt), vagy a lizoszómákkal való fúziójuk csökkenését (és ezáltal az autofágia degradációjának gátlását) tükrözheti. Az autofágia fluxus módosulásának pontos természetét tovább elemeztük a p62, egy jól ismert, kifejezetten autofágia útján lebomló fehérje mennyiségi meghatározásával, amelynek mennyisége szintén jelentősen megnőtt (7a, b ábra, 172% ± 22%, p = 0,006). Az LC3 II és a p62 ezzel összefüggő növekedése a RyR1-Rec izomban a kontrollhoz képest azt sugallta, hogy a RyR1 csökkentése tehát az autofágia-áramlás gátlásával járt együtt. Ezenkívül az autofágia két gátlója, az mTOR és az S6 fehérje aktivációjának (foszforilációjának) növekedése (7b, c ábra) volt megfigyelhető (P-mTOR/mTOR növekedés 174% ± 17%, p = 0,01; P-S6/S6 növekedés 320% ± 50%, p < 0,001). E két autofágia-inhibitor foszforilációjának növekedése a RyR1-Rec állatokban a kontrollokhoz képest tovább mutatott arra, hogy az autofágia gátlása felelős az izomsorvadásért a RyR1-Rec állatokban.

Ábr. 7

Autofágia gátolt a RyR1-Rec D75 egerek quadriceps izomában. a, c Reprezentatív Western blot 4 CTRL és 4 RyR-Rec quadriceps izom homogenátumán. b A GAPDH mennyiségére normalizált fehérje mennyiségének számszerűsítése minden csoportban 8-12 egérben (CTRL, fekete sávok; RyR1-Rec, kék sávok). Az S6 és az mTOR esetében az értékeket a foszforilált/nem-foszforilált fehérje arányaként mutatjuk be. Az egyes állatokra vonatkozó érték legalább 3 blot átlaga. Minden adat átlag ± SEM értékben van feltüntetve. A CTRL csoportban az átlagértéket minden fehérje esetében 1-re állítottuk be. Statisztikai elemzés: t-próba Holm-Sidak módszerrel többszörös összehasonlításokra

A humán betegek biopsziáiban a RyR1-Rec egerekben megfigyeltekhez hasonló defektusok figyelhetők meg

A közelmúltban egy recesszív veleszületett myopathiában szenvedő betegek nagy kohorszán végzett vizsgálatban , a RyR1 mennyiségének csökkenésével járó betegek több mint felében atipikus struktúrák, úgynevezett “poros magok” jelenlétét azonosítottuk. Ezeket többszörös festéssel figyeltük meg, és a klasszikus központi magtól (oxidatív festéstől mentes, jól definiált régiók) a rosszul definiált határok, a fokális myofibrilláris dezorganizáció, a Gomori-trikróm festésnél vöröses-lilás szemcsés anyaglerakódás és az oxidatív festésnél csökkent vagy/és fokozott enzimatikus aktivitású kevert terület révén különböznek (Additional file 1: S7 ábra). Ezek a szerkezeti változások tükrözik az egérmodellünkben megfigyelt módosításokat (4. ábra és Additional file 1: S7 ábra). Ezért tovább hasonlítottuk össze az új egérmodellünket és a RyR1 fehérje csökkenésével és “poros magokkal” rendelkező betegekből származó izombiopsziákat. Kvantitatív Western blot segítségével megbecsültük az egérmodellünkben egyértelműen módosított fehérjék mennyiségét 5 recesszív Dusty Core betegségben (két RyR1 mutáció RyR1 fehérje csökkenést eredményez – 8a. ábra) szenvedő betegben is. Referenciaként különböző korú (3,5 és 64 év közötti) kontroll biopsziákat használtunk. A RyR1 fehérje nagymértékű csökkenése volt megfigyelhető minden betegnél (átlagos expressziós szint 19,8% ± 2,2% a CTRL-hez képest, p < 0,001). Ezenkívül a CLIMP63 és a desmin növekedését is megfigyelték. A RyR1 csökkenése a CLIMP63 jelentős növekedésével járt együtt (átlagos expressziós szintnövekedés ötszörösére, 516% ± 220%). Ezenkívül a desmin expressziós szintje is drasztikusan megnőtt a betegeknél a kontrollhoz képest (átlagos expressziós szintnövekedés 240-szeresére, 24 170% ± 7 635%). Elektronmikroszkópos vizsgálatot alkalmazva a betegek biopsziájának ultrastruktúrájának elemzésére, minden betegnél számos membránköteg volt megfigyelhető a dezorganizált régiókban (8c. ábra, nyilak). Ezek a régiók, hasonlóan a RyR1-Rec izomban megfigyelt halmokhoz (4b. ábra), egy közös mechanizmusra utaltak, mind az egerekben, mind az emberben, amely e struktúrák kialakulásához vezet a RyR1-redukció eredményeként. A Dusty Core betegségben szenvedő betegekével megegyező módosítások mellett ez a modell tehát releváns modellt képez a patofiziológiai mechanizmusok tanulmányozására.

8. ábra

A humán betegek biopsziáinak elemzése a RyR1-Rec egerekben megfigyeltekhez hasonló hibákat mutat. a Humán biopsziákból származó izomhomogenátumon végzett reprezentatív Western blot. C1: kontroll, 23 éves, nő; C2: kontroll, 3,5 éves, férfi; P1: CCD (Dusty core), p.M2423K + p.R2441* mutációk, 43 éves, férfi; P2: CCD (Dusty core), p.T4709M + p.R1409* mutációk, 4 éves, férfi; P3: CCD (Dusty core), p. + p.Val788Cysfs*96, 25 éves, nő; P4: CCD (Dusty core), mutációk p.R2140W + p.L4828R, 9 éves, nő; P5: CCD (Dusty core), mutációk p.M4000del + p.Met2312Cysfs*118, 28 éves, nő. b A fehérje mennyiségének kvantitatív meghatározása, normalizálva miozinra (RyR1, CLIMP63 és Desmin esetében) vagy GAPDH-ra (p62 esetében). Az adatok 10 kontrollminta (CTRL) és 5 betegminta (betegek) átlaga ± SEM értékeként szerepelnek. Az egyes betegekre vonatkozó érték legalább 2 Western blot átlaga. A CTRL mintákban az egyes fehérjék átlagértékét 1-re állítottuk be. RyR1 expressziós szint a kontrollokhoz képest: P1-26 ± 6%, P2-14 ± 6%, P3-20 ± 3%, P4-23 ± 3%, P5-16 ± 2%. CLIMP63 expressziós szint a kontrollhoz képest: P1-130% ± 12%, P2-1372% ± 385%, P3-466% ± 92%, P4-262% ± 35%, P5-350% ± 85%). Desmin expressziós szint a kontrollhoz képest: P1-47,789% ± 6097%; P2-10,052% ± 2957%; P3-36,745% ± 7150%; P4-14,951% ± 5584%; P5-11,307% ± 2858%. Student t teszt RyR1 p < 0,001, CLIMP63 p = 0,016, Desmin p < 0,001 c A diagnózis során készült elektronmikroszkópos képek, amelyek a P2 és P5 betegek biopsziáinak dezorganizált magterületén a membránok többszörös halmazát mutatják. Hasonló struktúrákat azonosítottak az öt beteg izombiopsziáiban. Sáv 1 µm

Vélemény, hozzászólás?

Az e-mail-címet nem tesszük közzé.