Reducerea in vivo a RyR1 în mușchi declanșează o miopatie de tip nucleu

Generația RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2 model de șoarece

O linie de șoareci cu situsuri loxP inserate pe ambele părți ale exonilor 9-11 ai genei RYR1 (așa-numita RyR1Flox/Flox) a fost împerecheată cu linia de șoareci HSA-Cre-ERT2 care exprimă recombinaza Cre-ERT2 dependentă de tamoxifen sub controlul genei α-actina a mușchiului scheletic uman , pentru a crea RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2. Injectarea de tamoxifen induce activarea recombinazei Cre-ERT2 în mod selectiv în mușchiul scheletic, ceea ce duce la deleția exonilor 9-11 și la întreruperea genei RYR1 în mușchiul scheletic cu o dependență strictă de tamoxifen (Fig. 1a). La naștere, șoarecii RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2 au fost normali, iar la vârsta de 2 luni, odată ajunși adulți tineri, recombinarea a fost indusă prin injectarea de tamoxifen (din acest moment, animalele recombinate au fost numite RyR1-Rec). Consecințele moleculare și fiziologice au fost studiate în continuare în funcție de timp, până la 105 zile după inducerea recombinării (Fig. 1b). Animalele de control (CTRL) sunt animale de rând RyR1Flox/Flox (fără transgenul HSA-Cre-ERT2) injectate cu tamoxifen. Fenotipul general al șoarecilor recombinați la 75 de zile este caracterizat de o cifoză asociată cu o mobilitate anormală a membrelor posterioare și cu un mers dârz. Animalele sunt încă capabile să se ridice pe picioarele din spate pentru a se hrăni, dar peletele de hrană au fost administrate sistematic direct în cușcă pe măsură ce boala a progresat. La 105 zile, animalele sunt încă mobile în cuștile lor și nu s-a observat o creștere a ratei de mortalitate în comparație cu CTRL. Au fost afectați atât masculi, cât și femele. Cantitatea relativă de RyR1 la nivel de ARNm a fost analizată în mușchiul cvadriceps la fiecare 15 zile după recombinare cu ajutorul RT-q-PCR la animalele CTRL și la animalele RyR1-Rec (Fig. 1c). S-a observat o scădere rapidă a RyR1 mRNA, cu un nivel scăzut și stabil de 21% ± 4% din valoarea inițială, atins imediat după 3 zile de la injectarea de tamoxifen. O reducere a fost observată în toți mușchii testați la 75 de zile după inducerea recombinării (cvadriceps, tibialis anterior, EDL, soleus, Fișier suplimentar 1: Fig. S1A). Cantitatea de proteină RyR1 a fost analizată în continuare, utilizând Western blot cantitativ în omogenatele musculare de cvadriceps (Fig. 1d, e). Această cantitate a fost redusă progresiv și a ajuns la aproximativ 50% din valoarea inițială după 105 zile. Nu a fost observată nicio reducere suplimentară a proteinei RyR1 la perioade mai lungi (datele nu sunt prezentate). Cantitatea de proteină RyR1 a fost cuantificată în diferite omogenate musculare la 75 de zile după recombinare. O reducere a fost observată în toți mușchii analizați, deși cantitatea rămasă a fost ușor diferită între mușchi, cea mai mare fiind în interosoasă (64% ± 5%) și cea mai mică în soleus (33% ± 5%) (Fișier suplimentar 1: Fig. S1B).

Fig. 1

Diminuarea ARNm și a proteinelor RyR1 după injectarea de tamoxifen în modelul de șoarece RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2. a Au fost inserate situsuri LoxP pe ambele părți ale exonilor 9-11 în alela RyR1 WT pentru a crea alela RyR1-flox. După recombinare, alela RyR1-Rec este ștearsă împreună cu exonii 9-11. Amorsele utilizate pentru amplificarea RT-q-PCR a transcriptului RyR1 din panoul de îngrijire reprezentate de săgețile roșii în exonul 103 și, respectiv, 104. b Animalele au fost injectate cu tamoxifen pentru a induce recombinarea la vârsta de 2 luni (D0) și au fost analizate la momente variabile după aceea. c Cantitatea relativă de ARNm în comparație cu beta-actina, HPRT și GAPDH ca gene de referință a fost evaluată cu ajutorul RT-q-PCR în mușchii cvadricepsului de n = 3-6 șoareci diferiți la fiecare moment, și este prezentată ca medie ± SEM pentru fiecare moment. Cantitatea la perechea de litieră CTRL a fost stabilită la 1. Cuantificarea a fost realizată prin metoda ∆∆Ct. Analiza statistică: One way ANOVA cu testul Holm-Sidack pentru comparații multiple. d Cantitatea relativă de RyR1 în comparație cu lanțul greu de miozină a fost evaluată prin Western blot cantitativ în omogenatele de cvadriceps de n = 3-6 șoareci diferiți la fiecare punct de timp. Cantitatea inițială a fost stabilită la 1. e Western blot reprezentativ al RyR1 pe omogenate de cvadriceps CTRL și RyR1-Rec la diferite momente de timp, utilizând lanțul greu al miozinei ca un control al cantității de proteine. Analiza statistică: One way ANOVA cu testul Holm-Sidack pentru comparații multiple

Șoarecii RyR1-Rec prezintă o reducere progresivă a greutății musculare și corporale și a forței musculare

Consecințele reducerii RyR1 au fost studiate mai întâi la nivelul întregului animal. Inițial la aceeași greutate, animalele CTRL au crescut încet în greutate de la 24,4 ± 0,4 la 30,6 ± 0,8 g la D90, în timp ce animalele RyR1-Rec au pierdut progresiv în greutate până la 20,6 ± 1,3 g la D90 (Fig. 2a). Atât masculii, cât și femelele au fost afectați și au pierdut aproximativ 13 % din greutatea corporală inițială după 75 de zile (Fișier suplimentar 1: Fig. S1C). Acesta este rezultatul unei pierderi de greutate observate în toți mușchii (Fișier suplimentar 1: Fig. S1D). Pentru a testa performanța musculară generală după reducerea RyR1, animalele au fost supuse la două teste de rezistență diferite. Mai întâi li s-a permis să atârne apucând o suprafață cu fire încrucișate cu toate cele patru labe până la 5 min, latența la cădere reflectând forța musculară. Testul de prindere efectuat în fiecare săptămână pe parcursul a 105 zile (Fig. 2b) a arătat că animalele RyR1-Rec au început să își piardă forța la 20-30 de zile după injectarea de tamoxifen, când cantitatea de RyR1 era de aproximativ 75-80% din valoarea sa inițială, și au fost incapabile să se agațe de grilă la aproximativ 75 de zile după injectarea de tamoxifen, deoarece cantitatea de RyR1 a ajuns la nivelul de aproximativ 60%. Forța musculară a fost, de asemenea, evaluată printr-un protocol de electrostimulare neinvazivă de 6 minute a mușchiului gastrocnemius, cuplat la imagistica prin rezonanță magnetică (IRM) anatomică sub anestezie generală. În timpul protocolului de electrostimulare a animalelor CTRL la 30 de zile după injectarea de tamoxifen (Fig. 2c, D30) s-a înregistrat un profil tipic de exerciții, cu o forță musculară inițială stabilă care a scăzut lent pe măsură ce mușchiul a obosit. În grupul CTRL, la D60 și D90, profilul de exerciții a arătat o îmbunătățire a forței musculare atunci când animalele au îmbătrânit (Fig. 2c). În schimb, performanța animalelor RyR1-Rec, similară cu cea a CTRL la D30, s-a deteriorat odată cu vârsta. Animalele RyR1-Rec nu au mai putut efectua exercițiul la D90 (Fig. 2c, RyR1-Rec D90). Volumul gastrocnemius măsurat cu ajutorul imaginilor RMN (Fig. 2d) a rămas stabil la animalele CTRL de la D30 (161 ± 5 mm3) la D90 (164 ± 4 mm3). În schimb, la șoarecii RyR1-Rec, volumul gastrocnemius a fost semnificativ mai mic decât la șoarecii CTRL de la D30 (141 ± 3 mm3, p = 0,003), și a fost redus în continuare până la 100 ± 3 mm3 la D60 (p < 0,001 în comparație cu CTRL la aceeași vârstă) și 69 ± 4 mm3 la D90 (p < 0,001 în comparație cu CTRL la aceeași vârstă). Tensiunea de contracție specifică maximă (tensiunea de contracție absolută normalizată la volumul muscular) confirmă faptul că ambele grupuri au prezentat o forță musculară similară la D30 (Fig. 2e), dar forța animalelor RyR1-Rec a scăzut dramatic, în timp ce a crescut la animalele CTRL pe măsură ce au înaintat în vârstă. În plus, modificările bioenergeticii mușchiului gastrocnemius în timpul electrostimulării au fost evaluate în mod noninvaziv la D60, utilizând spectroscopia RMN in vivo cu 31-fosfor (31P). În timp ce pH-ul intramiofibrilar bazal nu a fost diferit între cele două grupuri (Fișier suplimentar 1: Fig. S2A), gradul de acidoză la sfârșitul exercițiului a fost mai mic (p = 0,016) la animalele RyR1 Rec (Fișier suplimentar 1: Fig. S2B), sugerând astfel că fluxul glicolitic în mușchiul care face exerciții a fost redus la aceste animale. Mai mult, constanta de timp a resintezei fosfocreatinei post-exercițiu (τPCr) a fost semnificativ mai scurtă (p = 0,047) la șoarecii RyR1-Rec (Fișier suplimentar 1: Fig. S2C, D), reflectând o funcție mitocondrială îmbunătățită in vivo. Într-adevăr, sinteza PCr în timpul perioadei de recuperare post-exercițiu se bazează exclusiv pe sinteza oxidativă a ATP, astfel τPCr este considerat ca un indice al capacității de fosforilare oxidativă . În general, aceste rezultate indică faptul că reducerea progresivă a RyR1 este asociată cu o pierdere progresivă a greutății și o scădere a forței musculare.

Fig. 2

Șoarecii RyR1-Rec prezintă o reducere progresivă a greutății musculare și corporale și a forței musculare. a Greutatea corporală și b Forța musculară estimată în funcție de timp după recombinare cu ajutorul unui test de prindere în care timpul în care animalele pot atârna cu capul în jos pe o grilă până la 5 min (300 s). Datele sunt media ± SEM de n = 10-15 animale din fiecare grup, * p < 0,05 Testul t al lui Student cu corecția Holm-Sidack pentru comparații multiple. c Înregistrarea tensiunii dezvoltate de gastrocnemius în timpul unui protocol de electrostimulare 6 min la 2 Hz. Studiu longitudinal al acelorași animale (CRTL, panoul din stânga, și RyR1-Rec, panoul din dreapta) la diferite momente după recombinare, 30 de zile (D30), 60 de zile (D60) și 90 de zile (D90). Datele reprezintă media ± SEM de la n = 8 animale CRTL și n = 6 animale RyR1-Rec. d Volumul mușchiului gastrocnemian pentru șoarecii CRTL (n = 8) și RyR1-Rec (n = 6) la 30, 60 și 90 de zile după recombinare. Datele sunt media ± SEM. Analiză statistică: test post hoc LSD Fisher în urma unei ANOVA cu măsuri repetate în două direcții, *significativ diferit față de CTRL în același timp, asignificativ diferit față de D30 în același grup, bsignificativ diferit față de D60 în același grup. e Tensiunea maximă specifică de contracție (tensiunea maximă de contracție normalizată la volumul gastrocnemius). Analiza statistică: test post hoc LSD Fisher după ANOVA cu două măsuri repetate în două direcții *significativ diferit de CTRL în același timp, asignificativ diferit de D30 în același grup, bsignifiant de diferit față de D60 în același grup

Proprietățile fiziologice ale fibrelor izolate sunt compromise la șoarecii RyR1-Rec

Alterarea funcției musculare a fost caracterizată în continuare la nivelul fibrei musculare unice folosind o combinație de clampare de tensiune cu celule întregi și imagistică confocală . Rețeaua de tubuli T a fost imaginată prin colorarea membranei plasmatice cu di-8-anepps. Nu a fost observată nicio diferență calitativă în rețea (Fig. 3a, stânga) sau diferență cantitativă în densitatea medie a tubulilor T între fibrele CTRL și RyR1-Rec, pe lângă o scurtare ușoară, dar semnificativă a lungimii medii a sarcomerelor în repaus (Fig. 3a, graficele din dreapta). Afluxul de Ca2+ activat de tensiune prin DHPR (Fig. 3b-d) și al fluxului de eliberare de Ca2+ prin RyR1 (Fig. 3e-i) au fost evaluate simultan. În comparație cu fibrele CTRL, fibrele RyR1-Rec au prezentat curenți de Ca2+ activați de voltaj în DHPR cu un curs de timp similar (Fig. 3b), dar cu o densitate redusă, așa cum arată densitatea maximă a curentului în funcție de voltaj în cele două grupuri (Fig. 3c), ceea ce s-a tradus printr-o reducere cu 30% a conductanței maxime (Gmax), fără nicio modificare asociată a celorlalți parametri ai relației curent vs. voltaj (Fig. 3d). Dependența de voltaj a eliberării de Ca2+ SR a fost evaluată din imagistica cu scanare de linie a colorantului rhod-2 sensibil la Ca2+. Imaginile line-scan de la fibrele RyR1-Rec au fost calitativ similare cu cele de la fibrele CTRL (Fig. 3e), prezentând o creștere rapidă a fluorescenței la depolarizarea membranei tubului T, omogenă din punct de vedere spațial de-a lungul liniei scanate. Rata de eliberare a SR Ca2+ (Fig. 3g), calculată din modificările fluorescenței rhod-2 provocate de impulsuri de depolarizare de amplitudine crescândă (Fig. 3f), a prezentat o evoluție în timp similară în fibrele RyR1-Rec ca și în fibrele CTRL, dar, important, valorile de vârf au fost reduse în RyR1-Rec. Ajustarea ratei maxime de eliberare a SR Ca2+ în funcție de tensiune (Fig. 3h-graficul de sus) a indicat că rata maximă de eliberare a Ca2+ a fost redusă cu 25% în grupul RyR1-Rec (Fig. 3i, Max), factorul de pantă (k) a fost, de asemenea, ușor, dar semnificativ redus, în timp ce tensiunea de la mijlocul activării (V0,5) a rămas neschimbată. A fost observată o creștere ușoară (1,3 ms în medie), dar semnificativă a timpului până la viteza maximă de eliberare a SR Ca2+ în fibrele RyR1-Rec (Fig. 3h, graficul de jos). Nu au fost observate modificări în capacitățile de eliminare a Ca2+ citosolic al fibrelor (funcția de pompare SERCA), măsurată cu colorantul sensibil la Ca2+ de joasă afinitate fluo-4 FF în condiții de ne-egta-tamponare (Fișier suplimentar 1: Fig. S3). În general, aceste rezultate demonstrează că reducerea cu 35% a cantității de RyR1 în interosoasă este asociată cu o reducere cu 30% a curentului de calciu prin DHPR și o reducere cu 25% a fluxului de calciu prin RyR1.

Fig. 3

Cuplarea excitație-contracție în fibrele musculare izolate singure este alterată. Toate valorile sunt media ± SEM. Semnificația statistică a fost determinată cu ajutorul unui test t al lui Student. a Imagini confocale reprezentative ale rețelei de tubuli T colorate cu di-8-anepps dintr-o fibră CTRL și o fibră RyR1-Rec, permițând evaluarea densității tubulilor T și a lungimii sarcomerelor, realizate în 42 de fibre CTRL și 41 de fibre RyR1-Rec (4 șoareci în fiecare grup). b Curent reprezentativ DHPR Ca2+ de la o fibră CTRL și o fibră RyR1-Rec ca răspuns la pași de depolarizare de 0,5 s-lungime până la nivelurile indicate (increment de 10 mV). c Dependența de tensiune a densității de vârf a curentului DHPR Ca2+. d Parametrii obținuți din ajustarea curbelor c în 29 fibre CTRL și 30 fibre RyR1-Rec (5 șoareci în fiecare grup), (cf. Fișier suplimentar 1: Supl. Method). e Imagini reprezentative x,t ale fluorescenței rhod-2 (a.u.) de la o fibră CTRL și de la o fibră RyR1-Rec stimulată de un impuls de depolarizare cu clemă de tensiune la – 10 mV. f Tranziții de Ca2+ rhod-2 Ca2+ reprezentative cu medie de linie de la o fibră CTRL și de la o fibră RyR1-Rec ca răspuns la impulsuri de clemă de tensiune la nivelurile indicate. g Rata de eliberare a SR Ca2+ calculată din curbele prezentate în f. h Dependența de tensiune a ratei de vârf a eliberării SR Ca2+ (sus) și a timpului până la viteza de vârf a eliberării SR Ca2+ (jos). i Parametrii obținuți prin ajustarea ratei de vârf a eliberării SR Ca2+ în funcție de tensiune cu o funcție Boltzmann în fiecare fibră (cf. Fișierul suplimentar 1: Metoda suplimentară). Datele provin de la aceleași fibre ca în b-d

Reducerea RyR1 afectează structura mușchiului scheletic

Pentru a înțelege mai bine bazele acestor modificări funcționale asociate cu o scădere a RyR1, structura musculară a fost studiată la animalele RyR1-Rec la D75 după recombinare, și comparată cu cea a animalelor CTRL. Extensor digitorum longus (EDL), un mușchi cu contracție rapidă, soleus, un mușchi cu contracție lentă și tibialis anterior (TA), un mușchi mixt, au fost analizate cu ajutorul colorațiilor cu hematoxilină-eozină, NADH și tricromie Gomori. Colorațiile din TA, prezentate în Fig. 4a, arată o structură musculară anormală la animalele RyR1-Rec, fără fibroză sau nuclei centrali, dar cu atrofie a fibrelor, afectând atât fibrele de tip I, cât și cele de tip II (Tabelul 2). O dezorganizare a mitocondriilor, caracterizată prin acumulare locală / epuizare în regiunile adiacente ale aceleiași fibre (cap de săgeată și inset Fig. 4a) și o acumulare de colorare roșie observată cu tricromul Gomori (Fișier suplimentar 1: Fig. S4) a fost, de asemenea, observată, semănând cu nucleele prăfuite descrise recent la pacienți . Atrofia fibrelor a fost observată în ambele tipuri de fibre în EDL, deși reducerea a fost ușor mai importantă în fibrele de tip I (Tabelul 2). Secțiunea transversală TA a șoarecilor CTRL și RyR1-Rec a fost colorată cu anticorpi împotriva RyR1 și desmin. Nu s-a observat nicio modificare în distribuția RyR1 între fibrele de tip I și tip II în secțiunile TA RyR1-Rec, ceea ce indică o reducere similară a RyR1 în toate tipurile de fibre (Fig. 4b). În mod surprinzător, s-a observat o modificare importantă în distribuția desminei, cu o creștere uriașă în fibrele mici de tip I (Fig. 4b): în secțiunile CTRL TA, toate fibrele au prezentat o colorare periferică similară, în timp ce fibrele mici de tip I din secțiunile RyR1-Rec TA au fost puternic colorate atât la periferia fibrelor, cât și în citosol (inset Fig. 4b). Deși marcarea IF nu este cantitativă, aceste rezultate arată că reducerea RyR1 a fost cel mai probabil omogenă, fără diferențe uriașe între fibrele adiacente, așa cum s-a observat pentru desmină, cuantificarea realizată prin Western blot fiind reflectarea proteinei conținute în fiecare fibră și nu o medie a fibrelor cu 0% RyR1 și a fibrelor cu 100% RyR1 din cadrul aceluiași mușchi.

Fig. 4

Analizele histologice și de imunofluorescență arată defecte majore în mușchi. a TA Secțiune transversală de la șoareci CTRL și RyR1-Rec la D75 au fost colorate cu hematoxilină/eozină (H&E) și NADH. Localizarea mitocondriilor (colorarea NADH) este neomogenă în fibrele RyR1-Rec, în special în fibrele mici de tip I (lente) de culoare închisă, cu un conținut ridicat de mitocondrii (cap de săgeată și inset). Nucleii (puncte albastre cu colorare H&E) se află la periferia fibrelor și nu se poate observa nicio urmă de fibră regenerativă. Bară de 50 µm. b Secțiuni TA transversale de la șoareci D75 CTRL și RyR1-Rec au fost colorate cu anticorpi împotriva RyR1 (verde) și desmin (roșu). Bară 50 µm, și 10 µm în inserție

Tabel 2 Analiza diametrului fibrelor musculare

Organizarea triadelor a fost studiată în continuare cu ajutorul marcării prin imunofluorescență a fibrelor EDL izolate (Fig. 5a). Marcarea alfa-actininei (ca marker al liniei Z), a triadinei și a RyR1 (ca markeri ai triadelor) pe fibra EDL RyR1-Rec a demonstrat că reducerea cantității de RyR1 a dus la o dezorganizare generalizată a fibrei cu o localizare anormală a triadelor și întreruperea liniei Z, dar triadina și RyR1 erau încă parțial colocalizate. Deși triadele au rămas pe ambele părți ale liniei Z, linia Z nu a format o linie dreaptă ca în CTRL și, în schimb, a prezentat multe microdisrupții (inset Fig. 5a). Ultrastructura musculară a fost analizată cu ajutorul microscopiei electronice pe fibrele RyR1-Rec EDL la D75 (Fig. 5b). Unele regiuni aveau o structură relativ conservată (Fig. 5b, fibra din stânga), în timp ce unele regiuni adiacente erau foarte dezorganizate, cu întreruperea organizării regulate a sarcomerelor, dezorganizarea mitocondriilor și prezența a numeroase grămezi de membrane (Fig. 5b, săgeți, mărite în inserție), numite anterior triade multiple . Caracteristicile morfologice ale acestor triade multiple în comparație cu triadele simple normale sunt prezentate în tabelul 3, iar exemple suplimentare sunt prezentate în fișierul suplimentar 1: Fig. S5. Cuantificarea precisă a lățimii putative a tubului T, a lățimii putative a SR și a spațiului intermembranar (tubul T/SR) (Fișier suplimentar 1: Fig. S5) a demonstrat o creștere uriașă a dimensiunii medii a tubului T în acele triade multiple (creștere de două ori, ajungând la 202% din dimensiunea tubului T în triada normală), în timp ce lățimea medie a SR a fost doar ușor crescută (+ 10%), iar spațiul intermembranar nu a fost modificat. Aceste rezultate indică o dezorganizare structurală generalizată a mușchilor șoarecilor RyR1-Rec asociată cu remodelarea membranelor.

Fig. 5

Se observă o dezorganizare structurală generalizată în fibrele musculare EDL. a Fibrele EDL de la șoarecii D75 CTRL și RyR1-Rec au fost colorate cu anticorpi împotriva RyR1 (verde), triadin (roșu) și alfa-actinină (alb). Bar 10 µm și 2 µm în inserție. b Analiza prin microscopie electronică a secțiunii longitudinale EDL a șoarecilor D75 RyR1-Rec. Fibra superioară din stânga are o structură normală, fibra inferioară adiacentă este extrem de dezorganizată, cu grămezi mari de membrane (până la 15 grămezi, săgeți) care se extind pe câteva µm lungime. Inset-ul prezintă două triade multiple, în cea din stânga membranele corespunzătoare tubulilor T au fost colorate cu galben deschis și foile SR cu albastru deschis pentru a permite o mai bună vizualizare. În interiorul segmentului SR, de-a lungul zonei de contact cu tubul T adiacent, se poate observa o anumită densitate de electroni, care ar putea corespunde unei acumulări de proteine. Barele 1 µm

Tabel 3 Caracterizarea morfologică a triadelor simple și multiple

Reducerea RyR1 este asociată cu modificarea cantității a numeroase proteine

Consecințele reducerii RyR1 au fost studiate la nivel molecular prin Western blot cantitativ pe mușchiul cvadriceps al CTRL sau RyR1-șoareci Rec (8 animale în fiecare grup) la D75 după injectarea de tamoxifen (Fig. 6). Cantitatea relativă a numeroase proteine implicate direct sau indirect în manipularea calciului a fost estimată, folosind ca referință cantitatea totală de proteine determinată prin evaluarea fără colorare . Nu s-a observat nicio diferență în ceea ce privește cuantificarea RyR1 între această metodă și utilizarea lanțului greu al miozinei ca proteină de referință (comparație între Fig. 1, 6). Nu s-a observat nicio modificare semnificativă între mușchii CRTL și RyR1-Rec în ceea ce privește cantitatea de izoformă T95 a triadinei, proteina de legare a calciului CSQ1, Ca2+-ATPasa SERCA, FoF1-ATPasa mitocondrială și subunitatea alfa 1 a DHPR (Fig. 6a, b). În schimb, a fost observată o creștere a cantității de STIM1 (× 3,7 ± 1, p = 0,02), a izoformei triadinei T51 (× 1,6 ± 0,1, p < 0,001), a CLIMP63 (× 1,8 ± 0,2, p = 0,004) și a ORAI1 (× 3,7 ± 1, p = 0,017). Deoarece a fost observată modificarea localizării proteinei structurale desmin cu ajutorul marcării prin imunofluorescență (Fig. 5b), a fost cuantificat, de asemenea, nivelul de expresie a desminei și a fost observată o creștere uriașă a cantității de desmină (× 8,2 ± 1,2, p = 0,001). Localizarea CLIMP63 și STIM1 în fibrele RyR1-Rec EDL a fost analizată utilizând etichetarea imunofluorescentă și nu s-a observat nicio modificare majoră (Fișier suplimentar 1: Fig. S6). Prin urmare, reducerea proteinei RyR1 a fost asociată cu o creștere a diferitelor proteine implicate în reglarea calciului sau în arhitectura musculară.

Fig. 6

Analiza Western blot cantitativă a proteinelor exprimate în mușchii cvadricepsului la șoarecii D75 demonstrează o creștere a expresiei multor proteine. a Western blot-uri reprezentative pentru fiecare proteină pe omogenate de cvadriceps D75 de la 2 șoareci diferiți CTRL (C) și 2 șoareci RyR1-Rec (R). b Cuantificarea cantității fiecărei proteine normalizate la cantitatea totală de proteine pe 8 animale diferite din fiecare grup (CTRL, barele din spate și RyR1-Rec, barele albastre). Valoarea pentru fiecare animal reprezintă media a cel puțin 3 blot-uri. Toate datele sunt prezentate ca medie ± SEM. Valoarea medie în grupul CTRL a fost stabilită la 1 pentru fiecare proteină. Analiză statistică: test t cu metoda Holm-Sidak pentru comparații multiple

Autofagia este alterată ca urmare a reducerii RyR1

Alterarea autofagiei a fost observată în unele miopatii . Pentru a identifica mecanismele care conduc la atrofia musculară consecutivă reducerii RyR1, am căutat modificări ale fluxului de autofagie în mușchii RyR1-Rec. Cantitatea de LC3 II, o proteină de membrană a autofagozomilor, a fost evaluată prin Western blot cantitativ (Fig. 7a, b), și s-a observat o creștere a LC3 II (172% ± 32%, p = 0,03). Această creștere a autofagozomilor ar putea reflecta fie o creștere a formării autofagozomilor (datorită unei creșteri a procesului de autofagie), fie o scădere a fuziunii acestora cu lizozomii (și, prin urmare, o inhibare a degradării autofagiei). Natura precisă a modificării fluxului de autofagie a fost analizată în continuare prin cuantificarea p62, o proteină bine cunoscută, degradată în mod specific prin autofagie, a cărei cantitate a fost, de asemenea, semnificativ crescută (Fig. 7a, b, 172% ± 22%, p = 0,006). Creșterea asociată a LC3 II și a p62 în mușchiul RyR1-Rec comparativ cu controlul a sugerat că reducerea RyR1 a fost, prin urmare, asociată cu inhibarea fluxului de autofagie. Mai mult, a fost observată o creștere a activării (fosforilare) a doi inhibitori ai autofagiei, mTOR și proteina S6 (Fig. 7b, c), (P-mTOR/mTOR creștere cu 174% ± 17%, p = 0,01; P-S6/S6 creștere cu 320% ± 50%, p < 0,001). Creșterea fosforilării acestor doi inhibitori ai autofagiei la animalele RyR1-Rec în comparație cu cele de control a indicat și mai mult spre o inhibiție a autofagiei responsabilă de atrofia musculară la animalele RyR1-Rec.

Fig. 7

Autofagia este inhibată în mușchiul cvadricepsului la șoarecii RyR1-Rec D75. a, c Western blot reprezentativ pe 4 omogenate de mușchi cvadriceps CTRL și 4 omogenate de mușchi cvadriceps RyR-Rec. b Cuantificarea cantității de proteină normalizată în raport cu cantitatea de GAPDH la 8-12 șoareci din fiecare grup (CTRL, bare negre; RyR1-Rec, bare albastre). Pentru S6 și mTOR, valorile sunt prezentate ca raport dintre proteinele fosforilate/nefosforilate. Valoarea pentru fiecare animal reprezintă media a cel puțin 3 blot-uri. Toate datele sunt prezentate ca medie ± SEM. Valoarea medie în grupul CTRL a fost stabilită la 1 pentru fiecare proteină. Analiza statistică: Test t cu metoda Holm-Sidak pentru comparații multiple

Biopsiile pacienților umani prezintă defecte similare cu cele observate la șoarecii RyR1-Rec

Într-un studiu recent pe o cohortă mare de pacienți cu o miopatie congenitală recesivă , am identificat prezența unor structuri atipice, numite „nuclee prăfuite”, la mai mult de jumătate dintre pacienții cu o reducere a cantității de RyR1. Acestea au fost observate prin colorare multiplă și diferă de nucleul central clasic (regiuni bine definite lipsite de colorare oxidativă) prin marginile lor slab definite, dezorganizarea miofibrilară focală, o depunere de material granular roșiatic-violet la colorarea cu tricromul Gomori și o zonă amestecată cu activitate enzimatică scăzută sau/și crescută la colorarea oxidativă (Fișier suplimentar 1: Fig. S7). Aceste modificări structurale reflectă modificările observate în modelul nostru de șoarece (Fig. 4 și Fișierul suplimentar 1: Fig. S7). Prin urmare, am comparat în continuare noul nostru model de șoarece și biopsiile musculare de la pacienții cu o reducere a proteinei RyR1 și „nuclee prăfuite”. Folosind Western blot cantitativ, cantitatea de proteine care au fost modificate în mod clar în modelul nostru de șoarece a fost, de asemenea, estimată la 5 pacienți cu o boală recesivă Dusty Core (două mutații RyR1 care au dus la reducerea proteinei RyR1-Fig. 8a). Biopsii de control de vârste diferite (între 3,5 și 64 de ani) au fost folosite ca referință. O reducere mare a proteinei RyR1 a fost observată la toți pacienții (nivel mediu de expresie 19,8% ± 2,2% din CTRL, p < 0,001). În plus, s-a observat, de asemenea, o creștere a CLIMP63 și a desminei. Reducerea RyR1 a fost asociată cu o creștere importantă a CLIMP 63 (creșterea medie a nivelului de expresie de cinci ori, 516% ± 220%). În plus, nivelul de expresie al desminei a fost, de asemenea, drastic crescut la pacienți în comparație cu controlul (creșterea medie a nivelului de expresie de 240 de ori, 24 170% ± 7 635%). Folosind microscopia electronică pentru a analiza ultrastructura biopsiei pacienților, au fost observate multe stive de membrane în regiunile dezorganizate (Fig. 8c, săgeți) la toți pacienții. Aceste regiuni, similare cu grămezile observate în mușchiul RyR1-Rec (Fig. 4b), au indicat un mecanism comun, atât la șoareci, cât și la om, care a dus la formarea acestor structuri ca urmare a reducerii RyR1. Cu modificări identice cu cele de la pacienții cu boala Dusty Core, acest model constituie astfel un model relevant pentru studierea mecanismelor fiziopatologice.

Fig. 8

Analiza biopsiilor pacienților umani relevă defecte similare cu cele observate la șoarecii RyR1-Rec. a Western blot reprezentativ realizat pe omogenat muscular din biopsii umane. C1: control, 23 de ani, femeie; C2: control, 3,5 ani, bărbat; P1: CCD (Dusty core), mutații p.M2423K + p.R2441*, 43 de ani, bărbat; P2: CCD (Dusty core), mutații p.T4709M + p.R1409*, 4 ani, bărbat; P3: CCD (Dusty core), mutații p. + p.Val788Cysfs*96, 25 de ani, femeie; P4: CCD (nucleu Dusty), mutații p.R2140W + p.L4828R, 9 ani, femeie; P5: CCD (nucleu Dusty), mutații p.M4000del + p.Met2312Cysfs*118, 28 de ani, femeie. b Cuantificarea cantității de proteine, normalizată la miozină (pentru RyR1, CLIMP63 și Desmin) sau la GAPDH (pentru p62). Datele sunt prezentate ca medie ± SEM din 10 probe de control (CTRL) și din 5 probe de pacienți (pacienți). Valoarea pentru fiecare pacient reprezintă media a cel puțin 2 Western blot-uri. Valoarea medie pentru fiecare proteină din probele CTRL a fost stabilită la 1. Nivelul de expresie al RyR1 în comparație cu controalele: P1-26 ± 6%, P2-14 ± 6%, P3-20 ± 3%, P4-23 ± 3%, P5-16 ± 2%. Nivelul de expresie CLIMP63 în comparație cu controlul: P1-130% ± 12%, P2-1372% ± 385%, P3-466% ± 92%, P4-262% ± 35%, P5-350% ± 85%). Nivelul de expresie a desminei în comparație cu controlul: P1-47,789% ± 6097%; P2-10,052% ± 2957%; P3-36,745% ± 7150%; P4-14,951% ± 5584%; P5-11,307% ± 2858%. Student t test RyR1 p < 0,001, CLIMP63 p = 0,016, Desmin p < 0,001 c Imagini de microscopie electronică obținute în cursul diagnosticului, care prezintă multiple grămezi de membrane în regiunea centrală dezorganizată a biopsiilor pacienților P2 și P5. Structuri similare au fost identificate în biopsiile musculare ale celor cinci pacienți. Bară 1 µm

.

Lasă un răspuns

Adresa ta de email nu va fi publicată.