In vivo snížení RyR1 ve svalu vyvolává myopatii podobnou jádru

Generace RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2

Myší linie s místy loxP vloženými na obou stranách exonů 9-11 genu RYR1 (tzv. RyR1Flox/Flox) byla spárována s myší linií HSA-Cre-ERT2 exprimující tamoxifen dependentní rekombinázu Cre-ERT2 pod kontrolou genu α-aktinu lidského kosterního svalu , aby vznikla linie RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2. Injekce tamoxifenu indukuje aktivaci rekombinázy Cre-ERT2 selektivně v kosterním svalu, což vede k deleci exonů 9-11 a přerušení genu RYR1 v kosterním svalu s přísnou závislostí na tamoxifenu (obr. 1a). Při narození byly RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2 myši normální a ve věku 2 měsíců, kdy už byly mladé dospělé, byla rekombinace vyvolána injekcí tamoxifenu (od tohoto okamžiku se rekombinovaná zvířata nazývají RyR1-Rec). Molekulární a fyziologické důsledky byly dále studovány v závislosti na čase, a to až do 105 dnů po indukci rekombinace (obr. 1b). Kontrolní zvířata (CTRL) jsou vrstevníci RyR1Flox/Flox (bez transgenu HSA-Cre-ERT2), kterým byl aplikován tamoxifen. Celkový fenotyp rekombinovaných myší v 75 dnech je charakterizován kyfózou spojenou s abnormální pohyblivostí zadních končetin a vrávoravou chůzí. Zvířata jsou stále schopna postavit se na zadní nohy, aby se nakrmila, ale s postupujícím onemocněním jim byly systematicky podávány krmné granule přímo do klece. Ve 105 dnech jsou zvířata stále pohyblivá v kleci a nebyla pozorována zvýšená úmrtnost ve srovnání s CTRL. Postiženi byli samci i samice. Relativní množství RyR1 na úrovni mRNA bylo analyzováno ve čtyřhlavém svalu stehenním každých 15 dní po rekombinaci pomocí RT-q-PCR u zvířat CTRL a RyR1-Rec (obr. 1c). Byl pozorován rychlý pokles mRNA RyR1, přičemž nízké a stabilní hladiny 21 % ± 4 % původní hodnoty bylo dosaženo již 3 dny po injekci tamoxifenu. Snížení bylo pozorováno ve všech testovaných svalech 75 dní po indukci rekombinace (Quadriceps, tibialis anterior, EDL, soleus, Additional file 1: Obr. S1A). Množství proteinu RyR1 bylo dále analyzováno pomocí kvantitativního Western blotu v homogenátech čtyřhlavého svalu (obr. 1d, e). Toto množství se postupně snižovalo a po 105 dnech dosáhlo přibližně 50 % původní hodnoty. Při delší době nebylo pozorováno další snížení proteinu RyR1 (údaje nejsou uvedeny). Množství proteinu RyR1 bylo kvantifikováno v různých svalových homogenátech 75 dní po rekombinaci. Snížení bylo pozorováno ve všech testovaných svalech, ačkoli zbývající množství se mezi svaly mírně lišilo, přičemž nejvyšší bylo v interosseu (64 % ± 5 %) a nejnižší v soleu (33 % ± 5 %) (Additional file 1: Fig. S1B).

Fig. 1

Snížení mRNA a proteinu RyR1 po injekci tamoxifenu u myšího modelu RyR1Flox/Flox::HSA-Cre-ERT2. a Místa LoxP byla vložena po obou stranách exonů 9-11 v alele RyR1 WT za účelem vytvoření alely RyR1-flox. Po rekombinaci je alela RyR1-Rec s exony 9-11 odstraněna. Primery použité pro RT-q-PCR amplifikaci transkriptu RyR1 panelové péče jsou znázorněny červenými šipkami v exonu 103, resp. 104. b Zvířatům byl aplikován tamoxifen k vyvolání rekombinace ve věku 2 měsíců (D0) a poté byla analyzována v různých časových intervalech. c Relativní množství mRNA ve srovnání s beta-aktinem, HPRT a GAPDH jako referenčními geny bylo hodnoceno pomocí RT-q-PCR v kvadricepsových svalech n = 3-6 různých myší v každém časovém bodě a je prezentováno jako průměr ± SEM pro každý čas. Množství u CTRL vrhu bylo stanoveno na 1. Kvantifikace byla provedena pomocí metody ∆∆Ct. Statistická analýza: Jednosměrná ANOVA s Holm-Sidackovým testem pro vícenásobná srovnání. d Relativní množství RyR1 ve srovnání s těžkým myozinovým řetězcem bylo hodnoceno pomocí kvantitativního Western blotu v homogenátech kvadricepsu n = 3-6 různých myší v každém časovém bodě. Počáteční množství bylo stanoveno na 1. e Reprezentativní Western blot RyR1 na homogenátech kvadricepsů CTRL a RyR1-Rec v různých časových bodech s použitím těžkého myozinového řetězce jako kontroly množství proteinu. Statistická analýza: Jednosměrná ANOVA s Holm-Sidackovým testem pro vícenásobná srovnání

Myši RyR1-Rec vykazují progresivní snížení svalové a tělesné hmotnosti a svalové síly

Důsledky snížení RyR1 byly nejprve studovány na úrovni celého zvířete. Zpočátku při stejné hmotnosti zvířata CTRL pomalu přibývala na hmotnosti z 24,4 ± 0,4 na 30,6 ± 0,8 g v D90, zatímco zvířata RyR1-Rec postupně ztrácela hmotnost na 20,6 ± 1,3 g v D90 (obr. 2a). Postižení samci i samice ztratili po 75 dnech přibližně 13 % své původní tělesné hmotnosti (Additional file 1: Fig. S1C). To je důsledek úbytku hmotnosti pozorovaného ve všech svalech (Additional file 1: Fig. S1D). Pro testování celkové výkonnosti svalů po redukci RyR1 byla zvířata podrobena dvěma různým silovým testům. Nejprve jim bylo umožněno viset při uchopení zkříženého povrchu všemi čtyřmi tlapami až 5 min, přičemž latence do pádu odrážela svalovou sílu. Test úchopu prováděný každý týden po dobu 105 dní (obr. 2b) ukázal, že zvířata s RyR1-Rec začala ztrácet sílu 20-30 dní po injekci tamoxifenu, kdy množství RyR1 činilo asi 75-80 % původní hodnoty, a nebyla schopna viset na mřížce asi 75 dní po injekci tamoxifenu, protože množství RyR1 dosáhlo úrovně asi 60 %. Svalová síla byla rovněž hodnocena pomocí 6minutového protokolu neinvazivní elektrostimulace svalu gastrocnemius spojeného s anatomickou magnetickou rezonancí (MRI) v celkové anestezii. Během elektrostimulačního protokolu CTRL zvířat 30 dní po injekci tamoxifenu (obr. 2c, D30) byl zaznamenán typický profil cvičení se stabilní počáteční svalovou silou, která pomalu klesala s únavou svalu. U skupiny CTRL v D60 a D90 vykazoval profil cvičení zlepšení svalové síly při stárnutí zvířat (obr. 2c). Naproti tomu výkonnost zvířat RyR1-Rec se podobně jako u CTRL v D30 s věkem zhoršovala. Zvířata RyR1-Rec již nebyla schopna provádět cvičení v D90 (obr. 2c, RyR1-Rec D90). Objem gastrocnemia měřený pomocí MR snímků (obr. 2d) zůstal u zvířat CTRL stabilní od D30 (161 ± 5 mm3) do D90 (164 ± 4 mm3). Naproti tomu u myší RyR1-Rec byl objem gastrocnemiusu od D30 významně menší než u myší CTRL (141 ± 3 mm3, p = 0,003) a dále se zmenšil až na 100 ± 3 mm3 v D60 (p < 0,001 ve srovnání s CTRL ve stejném věku) a 69 ± 4 mm3 v D90 (p < 0,001 ve srovnání s CTRL ve stejném věku). Maximální specifické záškubové napětí (absolutní záškubové napětí normalizované k objemu svalu) potvrzuje, že obě skupiny vykazovaly v D30 podobnou svalovou sílu (obr. 2e), ale u zvířat RyR1-Rec síla dramaticky klesala, zatímco u zvířat CTRL s přibývajícím věkem rostla. Kromě toho byly v D60 neinvazivně hodnoceny změny bioenergetiky svalu gastrocnemius během elektrostimulace pomocí in vivo 31-fosforové (31P) MR spektroskopie. Zatímco bazální intramyofibrilární pH se mezi oběma skupinami nelišilo (Additional file 1: Fig. S2A), rozsah acidózy na konci cvičení byl nižší (p = 0,016) u zvířat s RyR1 Rec (Additional file 1: Fig. S2B), což naznačuje, že glykolytický tok ve cvičícím svalu byl u těchto zvířat snížen. Kromě toho byla časová konstanta resyntézy fosfokreatinu po cvičení (τPCr) u myší RyR1-Rec významně kratší (p = 0,047) (doplňkový soubor 1: obr. S2C, D), což odráží zlepšenou funkci mitochondrií in vivo. Syntéza PCr v období zotavení po cvičení je totiž závislá výhradně na oxidativní syntéze ATP, a proto se τPCr považuje za ukazatel kapacity oxidativní fosforylace . Celkově tyto výsledky naznačují, že progresivní redukce RyR1 je spojena s progresivní ztrátou hmotnosti a poklesem svalové síly.

Obr. 2

Myši RyR1-Rec vykazují progresivní snížení svalové a tělesné hmotnosti a svalové síly. a Tělesná hmotnost a b Svalová síla hodnocená jako funkce času po rekombinaci pomocí testu úchopu, při kterém zvířata vydrží viset hlavou dolů na mřížce až 5 min (300 s). Údaje jsou průměrem ± SEM n = 10-15 zvířat v každé skupině, * p < 0,05 Studentův t test s Holm-Sidackovou korekcí pro vícenásobná srovnání. c Záznam napětí vyvinutého v gastrocnemiu během 6minutového elektrostimulačního protokolu při 2 Hz. Longitudinální studie stejných zvířat (CRTL, levý panel, a RyR1-Rec, pravý panel) v různých časech po rekombinaci, 30 dní (D30), 60 dní (D60) a 90 dní (D90). Údaje jsou průměrem ± SEM n = 8 zvířat CRTL a n = 6 zvířat RyR1-Rec. d Objem svalu gastrocnemius u myší CTRL (n = 8) a RyR1-Rec (n = 6) 30, 60 a 90 dní po rekombinaci. Údaje jsou průměrné ± SEM. Statistická analýza: post hoc LSD Fisherův test po dvoucestném opakovaném měření ANOVA, *signifikantně odlišné od CTRL ve stejném čase, asignifikantně odlišné od D30 ve stejné skupině, bsignifikantně odlišné od D60 ve stejné skupině. e Maximální specifické záškubové napětí (maximální záškubové napětí normalizované na objem gastrocnemiusu). Statistická analýza: post hoc LSD Fisherův test po dvoucestném opakovaném měření ANOVA *signifikantně odlišné od CTRL ve stejném čase, asignifikantně odlišné od D30 ve stejné skupině, bsignifikantně odlišné od D60 ve stejné skupině

Fyziologické vlastnosti izolovaných vláken jsou u myší RyR1-Rec zhoršeny

Změna svalové funkce byla dále charakterizována na úrovni jednotlivých svalových vláken pomocí kombinace celobuněčné napěťové svorky a konfokálního zobrazování . Síť T-tubulů byla zobrazena pomocí barvení plazmatické membrány di-8-anepps. Nebyl pozorován žádný kvalitativní rozdíl v síti (obr. 3a, vlevo) ani kvantitativní rozdíl v průměrné hustotě T-tubulů mezi vlákny CTRL a RyR1-Rec, kromě mírného, ale významného zkrácení průměrné klidové délky sarkomer (obr. 3a, grafy vpravo). Současně byl hodnocen napěťově aktivovaný influx Ca2+ přes DHPR (obr. 3b-d) a tok uvolňování Ca2+ přes RyR1 (obr. 3e-i). Ve srovnání s vlákny CTRL vykazovala vlákna RyR1-Rec napěťově aktivované Ca2+ proudy DHPR s podobným časovým průběhem (obr. 3b), ale se sníženou hustotou, jak ukazuje závislost maximální proudové hustoty na napětí u obou skupin (obr. 3c), což se projevilo 30% snížením maximální vodivosti (Gmax) bez související změny ostatních parametrů závislosti proudu na napětí (obr. 3d). Závislost uvolňování Ca2+ ze SR na napětí byla hodnocena na základě liniového snímání barviva rhod-2 citlivého na Ca2+. Line-scan snímky z vláken RyR1-Rec byly kvalitativně podobné snímkům z vláken CTRL (obr. 3e) a ukazovaly rychlý nárůst fluorescence při depolarizaci membrány T-tubulu, prostorově homogenní podél snímané linie. Rychlost uvolňování SR Ca2+ (obr. 3g), vypočtená ze změn fluorescence rhod-2 vyvolaných depolarizačními pulzy se zvyšující se amplitudou (obr. 3f), vykazovala u vláken RyR1-Rec podobný časový průběh jako u vláken CTRL, ale co je důležité, vrcholové hodnoty byly u RyR1-Rec sníženy. Fitování vrcholové rychlosti uvolňování SR Ca2+ v závislosti na napětí (obr. 3h-vrchní graf) ukázalo, že maximální rychlost uvolňování Ca2+ byla ve skupině RyR1-Rec snížena o 25 % (obr. 3i, Max), faktor sklonu (k) byl také mírně, ale významně snížen, zatímco napětí střední aktivace (V0,5) se nezměnilo. U vláken RyR1-Rec bylo pozorováno mírné (v průměru 1,3 ms), ale významné prodloužení doby do vrcholu uvolňování SR Ca2+ (obr. 3h, dolní graf). Nebyly pozorovány žádné změny ve schopnosti vláken odstraňovat cytosolický Ca2+ (funkce pumpy SERCA), měřené pomocí nízkoafinitního barviva fluo-4 FF citlivého na Ca2+ v podmínkách bez pufru EGTA (Additional file 1: Fig. S3). Celkově tyto výsledky ukazují, že 35% snížení množství RyR1 v interosseu je spojeno s 30% snížením vápníkového proudu přes DHPR a 25% snížením toku vápníku přes RyR1.

Obr. 3

Vzbuzovací-kontrakční vazba v jednotlivých izolovaných svalových vláknech je změněna. Všechny hodnoty jsou průměrné ± SEM. Statistická významnost byla stanovena pomocí Studentova t-testu. a Reprezentativní konfokální snímky sítě T-tubulů obarvené di-8-aneppsem z CTRL a RyR1-Rec vlákna, umožňující hodnocení hustoty T-tubulů a délky sarkomer, provedené u 42 CTRL vláken a 41 RyR1-Rec vláken (4 myši v každé skupině). b Reprezentativní DHPR Ca2+ proud z CTRL a RyR1-Rec vlákna v reakci na 0,5 s dlouhé depolarizační kroky na uvedené úrovně (přírůstek 10 mV). c Napěťová závislost vrcholové hustoty DHPR Ca2+ proudu. d Parametry získané z fitování křivek c u 29 CTRL vláken a 30 RyR1-Rec vláken (5 myší v každé skupině), (viz Additional file 1: Supp. Method). e Reprezentativní x,t snímky fluorescence rhod-2 (a.u.) z vlákna CTRL a vlákna RyR1-Rec stimulovaného napěťovou kleští depolarizačním pulzem na – 10 mV. f Reprezentativní lineárně zprůměrované tranzienty rhod-2 Ca2+ z vlákna CTRL a z vlákna RyR1-Rec v reakci na napěťové klešťové pulzy na uvedené úrovně. g Rychlost uvolňování SR Ca2+ vypočtená z křivek uvedených v bodě f. h Závislost vrcholové rychlosti uvolňování SR Ca2+ na napětí (nahoře) a času do vrcholu rychlosti uvolňování SR Ca2+ (dole). i Parametry získané fitováním závislosti vrcholové rychlosti uvolňování SR Ca2+ na napětí pomocí Boltzmannovy funkce v každém vlákně (viz Additional file 1: Supplementary Method). Data jsou ze stejných vláken jako v b-d

Snížení RyR1 ovlivňuje strukturu kosterního svalu

Pro lepší pochopení podstaty těchto funkčních změn spojených se snížením RyR1 byla studována struktura svalu na RyR1-Rec zvířatech v D75 po rekombinaci a porovnána s CTRL zvířaty. Extensor digitorum longus (EDL), sval s rychlým záškubem, soleus, sval s pomalým záškubem, a tibialis anterior (TA), smíšený sval, byly analyzovány pomocí barvení hematoxylin-eosinem, NADH a Gomoriho trichromem. Barvení TA, uvedená na obr. 4a, ukazují abnormální strukturu svalu u zvířat RyR1-Rec, bez fibrózy nebo centrálních jader, ale s atrofií vláken, postihující jak vlákna typu I, tak vlákna typu II (tab. 2). Dezorganizace mitochondrií charakterizovaná lokální akumulací/deplecí v přilehlých oblastech téhož vlákna (hrot šipky a vložený obr. 4a) a akumulace červeného barvení pozorovaná pomocí Gomoriho trichromu (Additional file 1: Fig. S4), které se podobají prachovým jádrům nedávno popsaným u pacientů. Atrofie vláken byla pozorována u obou typů vláken v EDL, i když redukce byla o něco významnější u vláken typu I (tab. 2). Transverzální řez TA myší CTRL a RyR1-Rec byl obarven protilátkami proti RyR1 a desminu. V řezech RyR1-Rec TA nebyla pozorována žádná změna v distribuci RyR1 mezi vlákny typu I a typu II, což svědčí o podobné redukci RyR1 ve všech typech vláken (obr. 4b). Překvapivě byla pozorována významná modifikace v distribuci desminu s obrovským nárůstem u malých vláken typu I (obr. 4b): v řezech CTRL TA vykazovala všechna vlákna podobné periferní zbarvení, zatímco malá vlákna typu I v řezech RyR1-Rec TA byla silně zbarvena jak na periferii vláken, tak v cytosolu (vložený obr. 4b). Přestože značení IF není kvantitativní, tyto výsledky ukazují, že redukce RyR1 byla s největší pravděpodobností homogenní, bez velkých rozdílů mezi sousedními vlákny, jak bylo pozorováno u desminu, přičemž kvantifikace provedená pomocí Western blotu odráží protein obsažený v každém vlákně, a nikoli průměr vláken s 0 % RyR1 a vláken se 100 % RyR1 v rámci jednoho svalu.

Obr. 4

Histologické a imunofluorescenční analýzy ukazují významné defekty ve svalech. a TA Příčný řez z myší CTRL a RyR1-Rec v D75 byl obarven hematoxylinem/eosinem (H&E) a NADH. Lokalizace mitochondrií (barvení NADH) je ve vláknech RyR1-Rec nehomogenní, konkrétně v malých tmavých vláknech typu I (pomalých) s vysokým obsahem mitochondrií (hlava šipky a vložený obrázek). Jádra (modré tečky s barvením H&E) jsou na periferii vláken a nejsou patrné žádné známky regeneračních vláken. Bar 50 µm. b Příčné řezy TA z myší D75 CTRL a RyR1-Rec byly obarveny protilátkami proti RyR1 (zeleně) a desminu (červeně). Bar 50 µm a 10 µm v insetu

Tabulka 2 Analýza průměru svalových vláken

Organizace triád byla dále studována pomocí imunofluorescenčního značení izolovaných vláken EDL (obr. 5a). Značení alfa-aktininu (jako markeru linie Z), triadinu a RyR1 (jako markerů triád) na vláknech RyR1-Rec EDL prokázalo, že snížení množství RyR1 vedlo ke generalizované dezorganizaci vlákna s abnormální lokalizací triád a narušením linie Z, ale triadin a RyR1 byly stále částečně kolokalizovány. Ačkoli triády zůstaly na obou stranách linie Z, linie Z netvořila přímku jako u CTRL a místo toho vykazovala mnoho mikrodisrupcí (vložený obr. 5a). Ultrastruktura svalu byla analyzována pomocí elektronové mikroskopie na vláknech RyR1-Rec EDL v D75 (obr. 5b). Některé oblasti měly relativně zachovalou strukturu (obr. 5b, levé vlákno), zatímco některé přilehlé oblasti byly silně dezorganizované, s narušením pravidelné organizace sarkomer, dezorganizací mitochondrií a přítomností četných hromádek membrán (obr. 5b, šipky, zvětšeno ve vložce), dříve nazývaných mnohočetné triády . Morfologické rysy těchto mnohočetných triád ve srovnání s normálními jednoduchými triádami jsou uvedeny v tabulce 3 a další příklady jsou uvedeny v doplňkovém souboru 1: S5. Přesná kvantifikace předpokládané šířky T-tubulů, předpokládané šířky SR a mezimembránového prostoru (T-tubuly/SR) (Additional file 1: Fig. S5) prokázala obrovský nárůst střední velikosti T-tubulů v těchto vícenásobných triádách (dvojnásobný nárůst, dosahující 202 % velikosti T-tubulů v normální triádě), zatímco střední šířka SR se zvětšila jen nepatrně (+ 10 %) a mezimembránový prostor se nezměnil. Tyto výsledky ukazují na generalizovanou strukturální dezorganizaci svalů myší RyR1-Rec spojenou s remodelací membrán.

Obr. 5

Ve svalových vláknech EDL je pozorována generalizovaná strukturální dezorganizace. a Vlákna EDL od myší D75 CTRL a RyR1-Rec byla obarvena protilátkami proti RyR1 (zeleně), triadinu (červeně) a alfa-aktininu (bíle). Sloupek 10 µm a 2 µm ve vložce. b Analýza podélného řezu EDL myší D75 RyR1-Rec elektronovou mikroskopií. Horní levé vlákno má normální strukturu, sousední dolní vlákno je extrémně dezorganizované, s velkými stohy membrán (až 15 stohů, šipky) táhnoucími se na několik µm. Vložka představuje dvě vícenásobné triády, na levé z nich byly membrány odpovídající T-tubulům zbarveny světle žlutě a SR listy světle modře, aby se daly lépe zobrazit. Uvnitř segmentu SR, po celé délce místa kontaktu se sousedním T-tubulem, lze pozorovat určitou elektronovou hustotu, která by mohla odpovídat akumulaci proteinů. Sloupce 1 µm

Tabulka 3 Morfologická charakterizace jednoduché a vícenásobné triády

Snížení RyR1 je spojeno s modifikací množství četných proteinů

Důsledky snížení RyR1 byly studovány na molekulární úrovni pomocí kvantitativního Western blotu na čtyřhlavém svalu CTRL nebo RyR1-.Rec myší (8 zvířat v každé skupině) v D75 po injekci tamoxifenu (obr. 6). Bylo odhadnuto relativní množství četných proteinů, které se přímo nebo nepřímo podílejí na manipulaci s vápníkem, přičemž jako referenční bylo použito celkové množství proteinů stanovené bezbarvým hodnocením . Mezi touto metodou a použitím těžkého řetězce myozinu jako referenčního proteinu nebyl pozorován žádný rozdíl v kvantifikaci RyR1 (srovnání obr. 1, 6). V množství izoformy triadinu T95, proteinu vázajícího vápník CSQ1, Ca2+-ATPázy SERCA, mitochondriální FoF1-ATPázy a alfa 1 podjednotky DHPR nebyly mezi svaly CRTL a RyR1-Rec pozorovány žádné významné změny (obr. 6a, b). Naproti tomu bylo pozorováno zvýšení množství STIM1 (× 3,7 ± 1, p = 0,02), izoformy triadinu T51 (× 1,6 ± 0,1, p < 0,001), CLIMP63 (× 1,8 ± 0,2, p = 0,004) a ORAI1 (× 3,7 ± 1, p = 0,017). Protože byla pozorována modifikace lokalizace strukturního proteinu desminu pomocí imunofluorescenčního značení (obr. 5b), byla kvantifikována také hladina exprese desminu a byl pozorován enormní nárůst jeho množství (× 8,2 ± 1,2, p = 0,001). Lokalizace CLIMP63 a STIM1 v RyR1-Rec EDL vláknech byla analyzována pomocí imunofluorescenčního značení a nebyla pozorována žádná významná změna (Additional file 1: Fig. S6). Snížení proteinu RyR1 bylo tedy spojeno se zvýšením různých proteinů podílejících se na regulaci vápníku nebo na architektuře svalu.

Obr. 6

Kvantitativní Western blot analýza proteinů exprimovaných v kvadricepsových svalech myší D75 prokazuje zvýšení exprese mnoha proteinů. a Reprezentativní Western bloty pro každý protein na homogenátech kvadricepsů D75 od 2 různých myší CTRL (C) a 2 myší RyR1-Rec (R). b Kvantifikace množství každého proteinu normalizovaného k celkovému množství proteinů na 8 různých zvířatech v každé skupině (CTRL, zadní sloupce a RyR1-Rec, modré sloupce). Hodnota pro každé zvíře je průměrem nejméně 3 blotů. Všechny údaje jsou prezentovány jako průměr ± SEM. Průměrná hodnota ve skupině CTRL byla pro každý protein stanovena na 1. Statistická analýza: t test s Holm-Sidakovou metodou pro vícenásobná srovnání

Autofagie je změněna v důsledku snížení RyR1

Změna autofagie byla pozorována u některých myopatií . Za účelem identifikace mechanismů vedoucích k atrofii svalů v důsledku redukce RyR1 jsme hledali modifikace toku autofagie ve svalech RyR1-Rec. Množství LC3 II, membránového proteinu autofagozomů, bylo hodnoceno pomocí kvantitativního Western blotu (obr. 7a, b) a bylo pozorováno zvýšení LC3 II (172 % ± 32 %, p = 0,03). Tento nárůst autofagozomů by mohl odrážet buď zvýšení tvorby autofagozomů (v důsledku zvýšení procesu autofagie), nebo snížení jejich fúze s lyzozomy (a tedy inhibici degradace autofagů). Přesná povaha modifikace toku autofagie byla dále analyzována kvantifikací p62, známého proteinu specificky degradovaného prostřednictvím autofagie, jehož množství bylo rovněž významně zvýšeno (obr. 7a, b, 172 % ± 22 %, p = 0,006). Související zvýšení LC3 II a p62 ve svalech RyR1-Rec ve srovnání s kontrolou naznačuje, že snížení RyR1 je tedy spojeno s inhibicí toku autofagie. Kromě toho bylo pozorováno zvýšení aktivace (fosforylace) dvou inhibitorů autofagie, mTOR a proteinu S6 (obr. 7b, c) (zvýšení P-mTOR/mTOR o 174 % ± 17 %, p = 0,01; zvýšení P-S6/S6 o 320 % ± 50 %, p < 0,001). Zvýšení fosforylace těchto dvou inhibitorů autofagie u zvířat RyR1-Rec ve srovnání s kontrolami dále poukazovalo na inhibici autofagie zodpovědnou za svalovou atrofii u zvířat RyR1-Rec.

Obr. 7

Autofagie je inhibována u čtyřhlavého svalu myší RyR1-Rec D75. a, c Reprezentativní Western blot na homogenátech čtyřhlavého svalu myší CTRL a 4 myší RyR-Rec. b Kvantifikace množství proteinu normalizovaného k množství GAPDH u 8-12 myší v každé skupině (CTRL, černé sloupce; RyR1-Rec, modré sloupce). Pro S6 a mTOR jsou hodnoty prezentovány jako poměr fosforylovaného/nefosforylovaného proteinu. Hodnota pro každé zvíře je průměrem nejméně 3 blotů. Všechny údaje jsou prezentovány jako průměr ± SEM. Průměrná hodnota ve skupině CTRL byla pro každý protein stanovena na 1. Statistická analýza: t test s Holm-Sidakovou metodou pro vícenásobná srovnání

Biopsie lidských pacientů vykazují podobné defekty, jaké byly pozorovány u myší RyR1-Rec

V nedávné studii na velké kohortě pacientů s recesivní vrozenou myopatií , jsme u více než poloviny pacientů se sníženým množstvím RyR1 identifikovali přítomnost atypických struktur, tzv. prašných jader. Byly pozorovány vícenásobným barvením a od klasického centrálního jádra (dobře ohraničené oblasti bez oxidačního barvení) se liší špatně ohraničenými hranicemi, fokální myofibrilární dezorganizací, červenofialovým ukládáním granulovaného materiálu při barvení Gomoriho trichromem a smíšenou oblastí se sníženou a/nebo zvýšenou enzymatickou aktivitou při oxidačním barvení (Additional file 1: Fig. S7). Tyto strukturální změny odrážejí modifikace pozorované na našem myším modelu (obr. 4 a Additional file 1: Fig. S7). Proto jsme dále porovnávali náš nový myší model a svalové biopsie od pacientů se snížením proteinu RyR1 a „zaprášenými jádry“. Pomocí kvantitativního Western blotu bylo množství proteinů, které byly zřetelně modifikovány v našem myším modelu, odhadnuto také u 5 pacientů s recesivním onemocněním „prašných jader“ (dvě mutace RyR1 vedoucí k redukci proteinu RyR1 – obr. 8a). Jako referenční byly použity kontrolní biopsie různého věku (mezi 3,5 a 64 lety). U všech pacientů bylo pozorováno velké snížení proteinu RyR1 (průměrná hladina exprese 19,8 % ± 2,2 % CTRL, p < 0,001). Kromě toho bylo pozorováno také zvýšení CLIMP63 a desminu. Snížení RyR1 bylo spojeno s významným zvýšením CLIMP 63 (průměrné zvýšení hladiny exprese pětinásobně, 516 % ± 220 %). Kromě toho byla u pacientů ve srovnání s kontrolou drasticky zvýšena také úroveň exprese desminu (průměrné zvýšení úrovně exprese 240násobně, 24 170 % ± 7 635 %). Při použití elektronové mikroskopie k analýze ultrastruktury biopsie pacientů bylo u všech pacientů pozorováno mnoho stohů membrán v dezorganizovaných oblastech (obr. 8c, šipky). Tyto oblasti, podobné hromádkám pozorovaným ve svalu RyR1-Rec (obr. 4b), poukazovaly na společný mechanismus, jak u myší, tak u člověka, vedoucí ke vzniku těchto struktur v důsledku redukce RyR1. S identickými modifikacemi jako u pacientů s nemocí prachového jádra tak tento model představuje vhodný model pro studium patofyziologických mechanismů.

Obr. 8

Analýza biopsií lidských pacientů odhaluje podobné defekty, jaké byly pozorovány u myší s RyR1-Rec. a Reprezentativní Western blot provedený na svalovém homogenátu z lidských biopsií. C1: kontrola, 23 let, žena; C2: kontrola, 3,5 roku, muž; P1: CCD (Dusty core), mutace p.M2423K + p.R2441*, 43 let, muž; P2: CCD (Dusty core), mutace p.T4709M + p.R1409*, 4 roky, muž; P3: CCD (Dusty core), mutace p. + p.Val788Cysfs*96, 25 let, žena; P4: CCD (Dusty core), mutace p.R2140W + p.L4828R, 9 let, žena; P5: CCD (Dusty core), mutace p.M4000del + p.Met2312Cysfs*118, 28 let, žena. b Kvantifikace množství proteinu normalizovaného k myosinu (pro RyR1, CLIMP63 a Desmin) nebo ke GAPDH (pro p62). Údaje jsou prezentovány jako průměr ± SEM 10 kontrolních vzorků (CTRL) a 5 vzorků pacientů (pacienti). Hodnota pro každého pacienta je průměrem nejméně 2 Western blotů. Průměrná hodnota pro každý protein ve vzorcích CTRL byla stanovena na 1. Úroveň exprese RyR1 ve srovnání s kontrolami: P1-26 ± 6 %, P2-14 ± 6 %, P3-20 ± 3 %, P4-23 ± 3 %, P5-16 ± 2 %. Úroveň exprese CLIMP63 ve srovnání s kontrolou: P1-130 % ± 12 %, P2-1372 % ± 385 %, P3-466 % ± 92 %, P4-262 % ± 35 %, P5-350 % ± 85 %). Úroveň exprese desminu ve srovnání s kontrolou: P1-47,789% ± 6097%; P2-10,052% ± 2957%; P3-36,745% ± 7150%; P4-14,951% ± 5584%; P5-11,307% ± 2858%. Studentův t test RyR1 p < 0,001, CLIMP63 p = 0,016, Desmin p < 0,001 c Snímky z elektronové mikroskopie pořízené v průběhu diagnózy, na nichž jsou patrné vícenásobné hromádky membrán v oblasti dezorganizovaného jádra biopsií pacientů P2 a P5. Podobné struktury byly identifikovány ve svalových biopsiích pěti pacientů. Sloupec 1 µm

.

Napsat komentář

Vaše e-mailová adresa nebude zveřejněna.